search.noResults

search.searching

saml.title
dataCollection.invalidEmail
note.createNoteMessage

search.noResults

search.searching

orderForm.title

orderForm.productCode
orderForm.description
orderForm.quantity
orderForm.itemPrice
orderForm.price
orderForm.totalPrice
orderForm.deliveryDetails.billingAddress
orderForm.deliveryDetails.deliveryAddress
orderForm.noItems
Пакування: матеріали та технології (T1P) та (c) TopLyo®


«Фармацевтична галузь», № 1 (104), квітень 2025 (TL) (Schott AG,


Мюльгайм, Німеччина), а також (d) Valor®


(Valor; CORNING, Inc., Биг-


Флетс, США), проходили обробку на стерильній виробничій лінії за допомогою тунелю сухого нагрі- вання (≥250 °C; ≥3 хв) для депіро- генізації. (e) Флакони з нанесеним випалюванням силіконовим по- криттям (SO; Adelphi Healthcare Packaging, Гейвордс-Гіт, Велика Британія) промивали вручну. Полімерні флакони, включаючи (f) Daikyo Crystal Zenith®


(CZ; West


Materials Science, Оберн, Алабама, США), постачали готовими до вико- ристання (RTU). За спеціальним запитом додат-


Plas™ (SiO2


ково були доставлені флакони SiO2


тя (SiO2


Pharmaceutical Services, Ешвайлер, Німеччина), (g) OXYCAPT™ (Oxy; Mitsubishi Gas Chemical, Токіо, Япо- нія) і (h) SiO2


Plas; SiO2


вали в динамічній кліматичній каме- рі MKT240 (BINDER GmbH, Тутлінген, Німеччина). Флакони заповнювали 2 мл буферного розчину, закупорю- вали пробками, кріпили обтискними ковпачками та розміщували у кріо- боксі у шаховому порядку. Кожен крі- обокс, що вміщує максимум 49 фла- конів об’ємом 2 мл, заповнювали 25 флаконами. Швидкість охоло- дження та нагрівання морозильної камери встановлювали на 1 К·хв–1


, а


температуру відстежували відносно центрального флакона у кріобоксі. Зразки піддавали до 10 циклам змі- ни температури між 20 і –70 °C. Для тесту на падіння у заморо-


Plas без внутрішнього покрит- Plas u). Склад і спеціальні


характеристики типів флаконів на- ведено в таблиці. Сироваткові пробки діаметром


13 мм і алюмінієві кримп-кришки отримані від компанії West Pharmaceutical Services (Ешвай- лер, Німеччина). Буферний розчин складався з


9,3% (в/в) трегалози (Pfanstiehl, Во- кіган, США) та 0,02% (в/в) полісор- бату 80 (Croda GmbH, Неттетін, Ні- меччина) в 10 мМ гістидину (L-гісти- дин і L-гістидину гідрохлорид моно- гідрат; S.A. Ajinomoto Omnichem N.V., Мон-Сен-Гюберт, Бельгія) за pH 6,0. Буферний розчин і воду для аналітичних цілей фільтрували пе- ред використанням через фільтр із поліфториденілувілену (PVDF) Rotilabo 0,22 мкм (Carl Roth GmbH, Карлсруе, Німеччина). Діодометан та етиленгліколь для вимірювання кута контакту були придбані у ком- панії VWR International GmbH (Дарм- штадт, Німеччина).


2.2. Методи


2.2.1. Застосування механічного навантаження на флакони Механічне навантаження ліофіліза- цією та розморожуванням здійсню-


20 ПОВЕРНУТИСЯ ДО ЗМІСТУ


женому стані флакони виймали з морозильної камери за температу- ри –70 °C після дев’ятого циклу ліо філізації, переносили на сухий лід у спеціальну випробувальну башту для вільного падіння та ки- дали з висоти 1 м на сталеву плас- тину товщиною 3 мм у вертикаль- ному положенні.


2.2.2. Аналіз частинок за допо- могою світлової та сканувальної електронної мікроскопії з енер- гетично-дисперсійною рентге нів- сь кою спектроскопією Вміст десяти флаконів (n = 10) кожного типу досліджуваної систе- ми флакон-закупорка (CCS) пере- носили на полікарбонатний фільтр, покритий золотом (Unchained Labs, Плезантон, США; розмір пор — 3 мкм) і фільтрували під вакуумом у ламінарному потоці повітря. Ко- жен флакон промивали приблизно 1 мл води, а фільтр — приблизно 5 мл води. Зображення всіх части- нок на фільтрі отримували за допо- могою мікроскопа Axio Imager.M2m (Zeiss, Оберкохен, Німеччина) з 20-кратним об’єктивом у світлому та темному полі. Частинки ≥25 мкм, які, мож ливо, походили від флако- на, відбирали на основі морфоло- гічних характеристик, таких як форма, прозорість і блиск (Li et al., 2014), і додатково аналізували за допомогою сканувального елек- тронного мікроскопа Supra™ 55VP (SEM; Zeiss, Оберкохен, Німеччи- на) за 1 кВ. Елементний склад віді-


браних частинок визначали за до- помогою детектора X-Max 80N і програмного забезпечення AZtec Advanced (Oxford Instruments, Хай-Вікомб, Великобританія) за 10 кВ. Для узагальнення кількості виявлених частинок результати конвертували у кількість частинок на один флакон.


2.2.3. Аналіз поверхні флаконів за допомогою конфокальної ла- зерної сканувальної мікроскопії Перед аналізом флакони розріза- ли вздовж вертикальної осі, про- мивали водою для видалення за- лишків буфера та залишків від роз- різання, а потім висушували на повітрі. Було досліджено чотири точки вимірювання (MP) вздовж вертикальної осі флакона за допо- могою конфокального лазерного сканувального мікроскопа VK- X1000 (CLSM; Keyence GmbH, Ной-Ізенбург, Німеччина). MP1 розташована у зоні біля дна, котра, як повідомлялося, більш схильна до змін поверхні у флаконах зі скла типу I через процес формування флакона (Rupertus et al., 2014); MP2 та MP3 є референтними ді- лянками з (MP2) та без (MP3) кон- такту скла з препаратом; MP4 роз- ташована в зоні контакту флакона з пробкою. Мікроскопічні зобра- ження отримували з 20-кратним об’єктивом. Шорсткість поверхні визначали за допомогою 100-крат- ного об’єктива (роздільна здат- ність: 1024×786 пікселів) для ана- лізу площі 100×100 мкм у центрі зображень за допомогою про- грамного забезпечення Keyence Multi File Analyzer 2.2.0.93. Вплив кривизни флакона компенсували за допомогою інструмента Sec curved surf. (auto). Досліджували три флакони (n = 3).


2.2.4. Фізико-хімічна характе- ристика поверхні флаконів за до- помогою вимірювання контакт- ного кута Кут змочування на стінках флако- нів визначали за допомогою аналі- затора крапельної форми DSA25 (Kruess GmbH, Гамбург, Німеччина)


www.promoboz.com


Page 1  |  Page 2  |  Page 3  |  Page 4  |  Page 5  |  Page 6  |  Page 7  |  Page 8  |  Page 9  |  Page 10  |  Page 11  |  Page 12  |  Page 13  |  Page 14  |  Page 15  |  Page 16  |  Page 17  |  Page 18  |  Page 19  |  Page 20  |  Page 21  |  Page 22  |  Page 23  |  Page 24  |  Page 25  |  Page 26  |  Page 27  |  Page 28  |  Page 29  |  Page 30  |  Page 31  |  Page 32  |  Page 33  |  Page 34  |  Page 35  |  Page 36  |  Page 37  |  Page 38  |  Page 39  |  Page 40  |  Page 41  |  Page 42  |  Page 43  |  Page 44  |  Page 45  |  Page 46  |  Page 47  |  Page 48  |  Page 49  |  Page 50  |  Page 51  |  Page 52  |  Page 53  |  Page 54  |  Page 55  |  Page 56  |  Page 57  |  Page 58  |  Page 59  |  Page 60  |  Page 61  |  Page 62  |  Page 63  |  Page 64  |  Page 65  |  Page 66  |  Page 67  |  Page 68  |  Page 69  |  Page 70  |  Page 71  |  Page 72  |  Page 73  |  Page 74  |  Page 75  |  Page 76